• Przygotowanie prokariotycznych systemów ekspresyjnych niosących pożądane sekwencje genów kodujących peptydy lub białka
• Dobór warunków hodowli w skali laboratoryjnej w odniesieniu do: rodzaju medium hodowlanego, czasu prowadzenia hodowli, temp. w celu uzyskania najwyższej wydajności produkcji
• Uzyskanie stabilnych wektorów w szczepach bakteryjnych
• Zwiększenie skali produkcji rekombinowanych peptydów lub białek do skali ćwierć-technicznej

• Projektowanie genów: zidentyfikowanie sekwencji DNA kodujących regiony VL i VH przeciwciała. Zaprojektowanie odpowiedniego łącznika pomiędzy nimi
• Synteza genów i klonowanie: wprowadzenie zaprojektowanego genu do wektora ekspresyjnego w systemach bakteryjnych
• Ekspresja białka: produkcja w wybranym systemie ekspresyjnym, optymalizując warunki dla wysokiej wydajności i poprawnego fałdowania.
• Oczyszczanie: izolacja za pomocą technik chromatograficznych, takich jak chromatografia powinowactwa, aby uzyskać czyste i funkcjonalne białko

Projektowanie konstruktu CAR – opracowanie chimerycznego receptora antygenowego dopasowanego do specyficznych antygenów docelowych.

• Projektowanie precyzyjnych RNA-guidów dostosowanych do konkretnych sekwencji genetycznych i celów badawczych
• Przygotowanie wektorów z wybranym systemem CRISPR/Cas (np. Cas9, Cas12a), odpowiednio zoptymalizowanych pod kątem efektywności i specyficzności działania

• Analiza projektu: Omawiamy cele badawcze klienta oraz specyfikę próbek (np. typ DNA, źródło próbek)
• Dobór platformy: Pomagamy wybrać najlepszą platformę sekwencjonującą dostosowaną do Twoich potrzeb
• Rodzaj biblioteki: Określamy typ biblioteki odpowiedni do Twojego projektu, np. całogenomowe sekwencjonowanie (WGS), sekwencjonowanie ukierunkowane (targeted sequencing), metagenomika, czy RNA-seq

Programowanie szlaków metabolicznych, umożliwiające wydajną produkcję substancji biopodobnych, poprzez przygotowywanie konstruktów genetycznych kodujących geny odpowiedzialne za produkcję enzymów kontrolujących szlaki metaboliczne prowadzących do powstawania substancji biopodobnych

• Przygotowanie prokariotycznych systemów ekspresyjnych niosących pożądane sekwencje genów kodujących biopolimery
• Uzyskanie stabilnych wektorów w szczepach bakteryjnych
• Dobór warunków hodowli w skali laboratoryjnej w odniesieniu do: rodzaju medium hodowlanego, czasu prowadzenia hodowli, temp.dobór w celu uzyskania najwyższej wydajności produkcji biopolimerów
• Zwiększenie skali produkcji biopolimerów do skali ćwierć-technicznej

• Izolacja i oczyszczanie DNA
• Sprawdzanie stabilności plazmidów w szczepach bakteryjnych
• Reakcje mutagenezy ukierunkowanej genów (Site-directed Mutagenesis)
• Projektowanie i klonowanie genów do wektorów ekspresyjnych
• Klonowanie Gateway

• Oczyszczanie białek metodami chromatografii niskociśnieniowej LPLC do czystości min. 70%
• Refolding rekombinowanych białek i peptydów
• Oczyszczanie metodami chromatografii średniociśnieniowej na skalę laboratoryjną do czystości min. 90%
• Potwierdzenie prawidłowej struktury trzeciorzędowej i masy białek metodami MS/MS
• Zwiększenie skali produkcji rekombinowanych peptydów lub białek do skali ćwierć-technicznej